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細胞生物學:電轉化流程

2007-08-10 13:43 來源:
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  1.電轉化感受態(tài)細胞的制備

  1.用槍頭挑取單克隆菌落,投入盛有10ml LB液體培養(yǎng)基的50ml離心管中。(同時做培養(yǎng)基和槍頭的空白對照)

  2.37℃,220rpm,培養(yǎng)14-16個小時。

  3.第二天,以1:100的比例將這10ml菌液倒入1000ml LB液體培養(yǎng)基中,37度,220rpm,振搖2-3小時,每半小時測一次OD,當OD值達到0.3-0.4時,停止培養(yǎng)。

  4.將菌液在冰上預冷30分鐘,隨后將菌液分裝到500ml 預冷的離心杯中,4℃,2500rpm離心10分鐘。

  5.棄上清,離心杯中加入少量ddH2O,使沉淀懸浮后,再將水注滿離心杯,4℃,4000rpm離心10分鐘。

  6.棄上清,加少量滅菌水,重懸菌體,再將水注滿離心杯,4000rpm,4℃,離心10min.

  7.棄上清,往離心杯中加入少量10%甘油(滅菌,預冷),重懸菌體,再加滿10%甘油,  4℃, 4000rpm, 離心10min.

  8.  棄上清,每個離心杯中加入5ml10%的甘油,使沉淀懸浮后,將菌液以300ul/管分裝于1.5ml的離心管中,-80 ℃冰箱中保存。同時取100 μl感受態(tài)加0.01ng puc18直接電穿孔轉化,檢測轉化效率。

  9.次日觀察轉化子生長情況,并記錄。

  2.連接產物純化

  1.將連接產物轉移至一1.5ml Eppendorf管中,加入下列試劑:

  10ul  of  ddH2O

  2ul   of  3M NaAC(PH5.2)

  50ul  of  無水乙醇

  輕輕混勻,稍微離心并將其置于-20℃放置1小時以上;

  2.4℃,top Speed 離心30分鐘;

  3.小心移去上清,避免接觸到管底的沉淀物;

  4.加入500ul70%的乙醇,輕輕顛倒幾次洗滌沉淀(注:不要離心混勻);

  5.4℃,top Speed離心5分鐘;

  6.小心移去上清,將此Eppendorf管置空氣中直至無乙醇氣味;

  7.加入10ulddH2O重新溶解沉淀,4℃短期保存,-20℃長期保存?zhèn)溆茫?/P>

  3.電轉化

  1.從-80℃冰箱中取出感受態(tài)細胞,置于冰上解凍;

  2.取1 μl 純化后的質粒于一1.5ml的離心管中,將其和0.1CM的電極杯一起置于冰上預冷。

  3.將40~100ul解凍的感受態(tài)細胞轉移至此1.5ml 的離心管中,小心混勻,冰上放置10min.

  4.打開電轉儀,調至Manual,調節(jié)電壓為2.1KV.

  5.將此混合物轉移至已預冷的電極杯中,輕輕敲擊電極杯使混合物均勻進入電極杯的底部;

  6. 將電極杯推入電轉化儀,按一下pulse鍵,聽到蜂鳴聲后,向電擊杯中迅速加入1000μl的SOC液體培養(yǎng)基,重懸細胞后,轉移到1.5ml的離心管中。

  7.37℃,220-250rpm復蘇1小時。

  8. 取20ul轉化產物加160ulSOC涂板,放于37℃溫室,過夜培養(yǎng),次日查看轉化結果。其余菌液加1:1的30%的甘油后混勻-80℃保存。

  注:每塊加有Amp的平板上均勻涂有X-Gal 80μl ,SOC 80μl,IPTG 20 μl.

  4.電擊杯清洗流程

  1.用清水將電擊杯稍沖一下。

  2.向電擊杯中加入的75%酒精浸泡2hr.

  3.棄去酒精,再用蒸餾水沖洗2~3遍,然后用1ml的槍吸取超純水反復吹打電擊杯10遍以上。

  4.加入無水乙醇2ml于電擊杯中,浸泡30分鐘。

  5.棄去無水乙醇,于通風廚內揮干乙醇。

  6.將清洗好的電擊杯放入-20 ℃冰箱內待用。

  注:1.不同樣品使用的電機杯應分開;

  2.每周用1%酒精浸泡30分鐘。

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